一.開機程序
1.檢查穩(wěn)壓器電源,打開電源,穩(wěn)定5分鐘。
2.打開儲液箱,倒掉廢液,
并在廢液桶中加入400ml漂白水原液。打開壓力閥,取出鞘液桶,將鞘液桶加至4/5滿(一般可用三蒸水,做分選必須用PBS或FACSFlow),合上壓力閥。確實蓋緊桶蓋,檢查所有管路是否妥善安置。
3.將FACSCalibur開關(guān)打開,此時儀器功能控制鈕的顯示應是STANDBY,預熱5-10分鐘。排出過濾器內(nèi)的氣泡。
4.如果需要打印,打開打印機電源。
5.打開電腦,等待屏幕顯示出標準的蘋果標志。
6.執(zhí)行儀器PRIME功能一次,以排除Flow cell中的氣泡。
7.分析樣品時,先用FACAFlow 或PBS進行HIGH RUN約2分鐘。
做過分選后,每次開機后需沖洗管道:向分選裝置上裝上兩個50ml離心管,不接通濃縮系統(tǒng),摁下右下角白色按鈕開始沖洗。待自動停止
后接通濃縮裝置,同上法沖洗一次。
后接通濃縮裝置,同上法沖洗一次。
二.預設獲取模式文件(Acquisition Template Files)
1.從蘋果標志中選擇CELLQuest見一個新視窗,可利用此視窗編輯一個獲取模式文件。
2.選取屏幕左列繪圖工具中的Dot plot,繪出一個或多個Dot Plots(點圖)。從Dot Plot對話框中選取Acquisition作為圖形資料來源,并確定適當?shù)膞軸和y軸參數(shù)。
3.選取屏幕左列繪圖工具中的Histogram,同上法可繪出Histogram(直方圖)。
4.將此視窗命名后儲存于FACStation G3\BD Applications \CELLQuest Folder \EXP文件夾中,下次進行相同實驗時可直接調(diào)用。
本計算機中已設定兩個模式文件:ACQ和EXP,儲存于FACStation G3\BD Applications \CELLQuest \EXP文件夾中,ACQ用于細胞DNA檢測,EXP用于細胞表面標志分析。
三.用CELLQuest進行儀器的設定和調(diào)整
1.從蘋果畫面中選取CELLQuest,進入CELLQuest后在File指令欄中打開合適的獲取模式文件。
2.從屏幕上方Acquire指令欄中,選取Connect to Cytometer(快捷鍵: +B)進行電腦和儀器的連機。將出現(xiàn)的Acquisiton Control對話框移至合適位置。
3.從Cytometer指令欄中,開啟Detectors/Amps、Threshold、Compensation、Status等四個對話框,并將它們移至屏幕右方,以便獲取數(shù)據(jù)時隨時調(diào)整獲取條件。也可以用 +1,2,3,4獲得此四個對話框。
4.在Detectors/Amps對話框中,先為每個參數(shù)選擇適當?shù)谋对瞿J?amplifier mode):線性模式Lin或?qū)?shù)模式Log。一般進行細胞表面抗原分析如分析外周血的淋巴細胞亞群時,F(xiàn)SC和SSC多以線性模式Lin測量,且DDM Param選擇FL2,而FL1, FL2與FL3則以對數(shù)模式Log測量;分析細胞DNA含量時,F(xiàn)SC,SSC,F(xiàn)L1,F(xiàn)L2,F(xiàn)L3皆以Lin進行測量,且DDM Param選擇FL2;分析血小板表型時,F(xiàn)SC,SSC,F(xiàn)L1,F(xiàn)L2,F(xiàn)L3等均以Log進行測量。
5.放上待檢測的樣品,將流式細胞儀設定于RUN,流速可在HIGH 或LOW上。
6.在Acquisiton
Control對話框中,選取Acquire,開始獲取細胞。在以下的儀器調(diào)整過程中隨時選取Pause,Restart以觀察調(diào)整效果。未完全調(diào)整好之前不要去掉SETUP前的“”。
7.在Detectors/Amps對話框中,調(diào)整FSC和SSC探測器中的信號倍增度:PMT voltages(粗調(diào))與Amp Gains(細調(diào)),使樣品信號出現(xiàn)在FSC-SSC點圖內(nèi),且三群細胞合理分布。
8.在Threshold
對話框中選擇適當?shù)膮?shù)設定Threshold,并調(diào)整Threshold的高低,以減少噪音信號(細胞碎片)。一般做細胞表型時用FSC-H而做DNA時用FL2-H。Threshold并不影響檢測器對信號的獲取,但可改善畫面質(zhì)量。
9.從屏幕左列繪圖工具中選取Region(區(qū)域),并在靶細胞周圍設定區(qū)域線,即通常所說的門。圈定合適的細胞群可使儀器調(diào)整更為容易。
10.Detectors/Amps對話框中,調(diào)整熒光檢測器(FL1, FL2, FL3, FL4等)的倍增程度。根據(jù)所用的熒光陰性對照樣品調(diào)整細胞群,使之分布在正確的區(qū)域內(nèi)。
11.在Compensation對話框中,根據(jù)所用的調(diào)補償用標準熒光樣品調(diào)整雙色(或多色)熒光染色所需的熒光補償。比如應該為FL1+ FL2-
的細胞群卻分布在FL1+ FL2+區(qū)域內(nèi),則需調(diào)大FL2-?%FL1中的“?”,并從FL1-FL2點圖中觀察新的調(diào)整是否恰當
12.在Status對話框中可見:Laser Power:正常值—Run/Ready為14.7mW,Standby為5mW;Laser current:正常值為6Amps左右。
13.調(diào)整好的儀器設定可在Instrument Settings對話框中儲存,下次進行相同實驗時可調(diào)出使用,屆時只需微調(diào)即可。
本計算機中已有三個名叫儲存于FACStation G3 \BD Applications \CELLQuest Folder\IMM-InstrSettings及FACStation G3 \BD Files \Instrument Settings Files\CalibFile和Mast-Cell-Set的參數(shù)文件,前二者可用于分析人白細胞,后者用于分析小鼠肥大細胞。
四.通過預設的獲取模式文件進行樣品分析
1.從蘋果標志中選擇CELLQUEST,新視窗出現(xiàn)后從File指令欄中選擇Open,打開預設的獲取模式文件。
2.從屏幕上方Acquire指令欄中,選取Connect to Cytometer進行電腦和儀器的連機。將出現(xiàn)的Acquisiton
Control對話框移至合適位置。
3.從Cytometer指令欄中選取Instrument Settings,在其對話框中選擇Open以調(diào)出以前存儲的相同實驗的儀器設定,按Set 確定。
4.在Acquire指令欄中,選擇Acquisition&Storage決定儲存的細胞數(shù),參數(shù),信號道數(shù)。其中Resolution在做細胞表面標志時選擇256,做DNA時選擇1024。Parameter
Saved…則根據(jù)不同的檢測對象選擇不同的參數(shù)。
5.在Acquire指令欄中,選擇Parameter
Description,以決定文件存儲位置(folder),文件名稱(file),樣品代號以及各種參數(shù)的標記(panel),即安排tube1,2,3…的檢測參數(shù)。一般本儀器獲取的數(shù)據(jù)按照檢測對象的不同分別儲存于FACStation
G3\BD Applications \CELLQuest \IMM 和DNA 文件夾中。文件根據(jù)日期命名。
6.在Cytometer指令欄中,選擇Counters,將此對話框移至合適位置,以便于隨時觀察events計數(shù)。
7.將樣品試管放至檢測區(qū),在Acquire Control對話框中選取Acquire以啟動樣品分析測定。
8.微調(diào)儀器設定,待細胞群分布合適后選擇Acquire Control對話框中Pause, Abort,
去除Setup前的“”,開始正式獲取信號,存儲數(shù)據(jù)。
9.當一定數(shù)目的細胞被測定后,獲取會自動停止,并會自動存儲數(shù)據(jù)。重復步驟7,繼續(xù)分析下一個樣品,直到所有的樣品數(shù)據(jù)分析完畢。
當所有樣品分析分析完畢,即換上三蒸水,并將流式細胞儀置于“STANDBY”狀態(tài),以保護激光管。
五.關(guān)機程序:
1.從File中選擇Quit, 退出軟件,選擇Don’t Save至蘋果屏幕。
2.用4ml 1:10稀釋的漂白水作樣品,將樣品置于旁位(vacuum is on),以外管吸去約2ml,在將樣品架置于中位(vacuum is
off),再HIGH RUN 5分鐘(內(nèi)管吸去2ml)。
3.改用三蒸水4ml作樣品,同上處理。
4.按Prime三次。
5.此時儀器自動轉(zhuǎn)為STANDBY狀態(tài),換2ml三蒸水。必須在儀器處于“STANDBY”狀態(tài)
10分鐘后再依次關(guān)掉計算機、打印機、主機、穩(wěn)壓電源,以延長激光管壽命,并確保應用軟件的正常運行。
6.填寫使用登記表。